一、基礎(chǔ)染色技術(shù)

1. HE染色(蘇木精-伊紅染色)

• ?原理?：蘇木精(堿性染料)與帶負(fù)電荷的DNA結(jié)合染藍(lán)紫色細(xì)胞核；伊紅(酸性染料)與帶正電荷的蛋白質(zhì)結(jié)合染粉紅色細(xì)胞質(zhì)
  

• ?流程?：

1. 樣品制備：細(xì)胞接種于含蓋玻片的培養(yǎng)瓶，CO?培養(yǎng)箱培養(yǎng)至單層
   

2. 固定：95%乙醇固定15分鐘，PBS洗滌
   

3. 核染色：蘇木精染5-10分鐘→鹽酸乙醇分色→氨水藍(lán)化
   

4. 質(zhì)染色：伊紅染5-10分鐘
   

5. 脫水透明：梯度乙醇脫水，二甲苯透明
   

6. 封片觀察：中性樹膠封固，光鏡觀察
   

2. 熒光染色技術(shù)

• ?鬼筆環(huán)肽染色?：標(biāo)記微絲結(jié)構(gòu)，F(xiàn)ITC標(biāo)記后與DAPI核染色配合使用
  

• ?線粒體染色?：使用MitoTracker系列染料，利用線粒體膜電位特性特異性標(biāo)記
  

二、實驗操作要點(diǎn)

1. 通用流程

1. ?細(xì)胞準(zhǔn)備?：以2-10×103 cell/coverslip密度接種，培養(yǎng)48小時
   

2. ?固定?：3.7-4%甲醛/PBS室溫固定10分鐘
   

3. ?穿膜?：0.1% Triton X-100 + 0.1M Glycine冰上處理30分鐘
   

4. ?封閉?：5mg/ml BSA室溫封閉1小時
   

5. ?染色?：根據(jù)目標(biāo)結(jié)構(gòu)選擇特異性染料

2. 活死細(xì)胞染色

• 使用Calcein AM(標(biāo)記活細(xì)胞)和PI(標(biāo)記死細(xì)胞)雙染

• 共聚焦顯微鏡觀察

三、前沿技術(shù)發(fā)展

最新研究開發(fā)了"數(shù)字孿生"技術(shù)，通過AI驅(qū)動的3DCellScope系統(tǒng)實現(xiàn)類器官高速3D分析，突破傳統(tǒng)染色方法的局限
。該方法能：

• 多級分割(細(xì)胞核/細(xì)胞/類器官)

• 量化3D形態(tài)學(xué)和拓?fù)鋵W(xué)特征

• 無需復(fù)雜染色即可分析微重力等條件下的細(xì)胞響應(yīng)

四、注意事項

• 染料工作濃度需精確配置

• 不同結(jié)構(gòu)需要匹配特定染料(如DAPI染核，MitoTracker染線粒體)

• 染色時間影響結(jié)果質(zhì)量，通常30-60分鐘

• 保持pH穩(wěn)定(如HE染色需pH6.7-6.8)