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最近，總有小伙伴們前來詢問在做完電轉(zhuǎn)實驗后，發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染效率太低了該怎么辦，于是小優(yōu)通過搜集多方資料、詢問技術(shù)專家，為大家找來了一些解決方案，下面我們就來一起看看吧～

一、什么是電轉(zhuǎn)？

俗話說得好，知己知彼，方能百戰(zhàn)百勝，所以首先我們需要清楚電轉(zhuǎn)的原理。電轉(zhuǎn)，也稱電穿孔法，是通過脈沖電流在細胞膜上打孔，將外源分子（DNA、RNA 、mRNA等）導(dǎo)入真核細胞內(nèi)，來改變細胞的特性，從而達到改造細胞的目的，是實現(xiàn)細胞基因功能和蛋白質(zhì)表達研究的重要工具。與其他細胞轉(zhuǎn)染技術(shù)相比，電轉(zhuǎn)具有操作簡便、適用多種細胞、重復(fù)性好和轉(zhuǎn)染效率高等優(yōu)點。

二、影響電轉(zhuǎn)效率的因素有哪些呢？

影響電轉(zhuǎn)效率的因素有很多，總結(jié)下來有三方面：電轉(zhuǎn)過程、細胞狀態(tài)以及轉(zhuǎn)染底物狀態(tài)。只有了解影響電轉(zhuǎn)效率的因素有哪些，我們才能夠“對癥下藥"。

1.電轉(zhuǎn)過程

1）電轉(zhuǎn)的完整操作步驟包括電轉(zhuǎn)前操作，電轉(zhuǎn)執(zhí)行和電轉(zhuǎn)后培養(yǎng)。在進行電轉(zhuǎn)前操作時，電轉(zhuǎn)試劑、細胞與轉(zhuǎn)染底物要進行混勻，如果混勻時過于激烈，會破壞轉(zhuǎn)染復(fù)合物的形成，從而導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率降低；

2）在進行電轉(zhuǎn)前操作時，電擊緩沖液的選擇也很重要，由于細胞對緩沖液的離子組成和滲透壓非常敏感，因此組分與細胞質(zhì)類似的緩沖液有利于細胞電擊后的存活；

3）電轉(zhuǎn)執(zhí)行時，需要控制電場強度和脈沖時間。適當提高電場強度或延長脈沖時間，能使底物更容易進入細胞，但細胞的死亡率也會增加。一般電場強度設(shè)置遵循低電場長時程的原則。如果選擇內(nèi)置優(yōu)化程序的電轉(zhuǎn)系統(tǒng)，如Lonza的Nucleofector系統(tǒng)，則可以節(jié)省摸索電場強度和脈沖時間的步驟。

4）轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中含有抗生素會影響細胞轉(zhuǎn)染效率，這是因為轉(zhuǎn)染試劑對細胞有損傷，這時培養(yǎng)基中的抗生素會進一步損傷細胞，因此我們建議使用不含抗生素的培養(yǎng)基或PBS；

5）電轉(zhuǎn)后培養(yǎng)要注意，如果使用傳統(tǒng)轉(zhuǎn)染試劑，轉(zhuǎn)染后4-6h后必須進行換液，否則會由于轉(zhuǎn)染試劑毒性而引起細胞死亡，最終影響轉(zhuǎn)染效率。

2.細胞狀態(tài)

1）細胞污染對細胞狀態(tài)的影響很大，受到細菌、真菌或支原體污染的細胞都會導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率降低、細胞死亡率增加，尤其是支原體污染悄無聲息，因此一定要做好定期的支原體檢測，確保細胞狀態(tài)；

2）細胞培養(yǎng)到不同密度都能用于電轉(zhuǎn)，但好的轉(zhuǎn)化效率是在細胞的對數(shù)生長期（15代以內(nèi)，傳代后2d）。當細胞處于對數(shù)生長期時，有絲分裂較旺盛，表面結(jié)構(gòu)密度比穩(wěn)定期的細胞差，電轉(zhuǎn)后，細胞膜的恢復(fù)能力強，而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA。

3.轉(zhuǎn)染底物狀態(tài)

1）不同的轉(zhuǎn)染底物對轉(zhuǎn)染效率都會產(chǎn)生不同的影響，例如質(zhì)粒DNA在大小、用量以及構(gòu)象這三方面都影響著電轉(zhuǎn)效率，IRES導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率低，轉(zhuǎn)染mRNA需要調(diào)整洗滌次數(shù)等等；

2）轉(zhuǎn)染試劑與底物的配比，也會影響轉(zhuǎn)染效率，因此需要根據(jù)說明書或參考文獻來進行配比優(yōu)化實驗，選用最佳配比濃度；

3）底物的內(nèi)毒素，也會影響轉(zhuǎn)染效率，內(nèi)毒素含量過高，會導(dǎo)致轉(zhuǎn)染過程中細胞狀態(tài)變差，從而增加細胞死亡率，降低轉(zhuǎn)染效率，因此要對內(nèi)毒素進行控制。

三、如何提高電轉(zhuǎn)效率？

我們都知道，電轉(zhuǎn)的操作是需要借助儀器來完成的，因此除了要考慮上面的這些因素外，更重要的是選擇一個高效的電轉(zhuǎn)儀。Nucleofector™技術(shù)是Lonza公司的zhuan利創(chuàng)新技術(shù)，利用電擊在細胞膜上開個小孔，綜合各種特定細胞轉(zhuǎn)染程序與轉(zhuǎn)染液的作用，核酸底物不僅可以進入細胞質(zhì)，還可直接通過核膜進入細胞核。相較于傳統(tǒng)電轉(zhuǎn)技術(shù)，Nucleofector™技術(shù)的細胞轉(zhuǎn)染率可達99%，且實現(xiàn)轉(zhuǎn)染不依賴于細胞的分裂。

01 Nucleofector™技術(shù)核心：核電轉(zhuǎn)

利用特定的轉(zhuǎn)染試劑和細胞保護劑，通過細微差別的電脈沖，使得轉(zhuǎn)染物質(zhì)不僅可以直接進入細胞質(zhì)，而且可以直接通過核膜進入到細胞核。

注：圖片來自Lonza

02 Nucleofector™技術(shù)組成

1）Nucleofector™設(shè)備：內(nèi)置針對每種細胞優(yōu)化好的轉(zhuǎn)染參數(shù)。

2）配套試劑盒：試劑盒是包含有轉(zhuǎn)染試劑，細胞保護劑，專用電極杯，吸管、pmaxGFP™陽性質(zhì)粒。

3）數(shù)據(jù)庫與操作手冊：幾百種細胞的詳細的優(yōu)化方案，不僅有轉(zhuǎn)染步驟，也包含了核轉(zhuǎn)染前后細胞的處理，如細胞來源、傳代、生長條件、培養(yǎng)基以及轉(zhuǎn)染后培養(yǎng)等細節(jié)技巧。

03 提高電轉(zhuǎn)效率的方法

1.細胞收集時：

1)在消化貼壁細胞時，一定要注意終止胰酶反應(yīng)，防止過度消化；最好使用專業(yè)的胰酶中和劑；

2)在進行細胞離心時，使用低轉(zhuǎn)速長時間離心，提升細胞的存活率；

3)選擇合適狀態(tài)的細胞，一般原代細胞可以傳1-2次后使用；盡量挑選迭代次數(shù)少的細胞，如果是凍存細胞，建議復(fù)蘇1-2h后使用；

4)選擇對數(shù)增長期的細胞；

5)做好支原體清除。

2.試劑添加：

1）電轉(zhuǎn)試劑的添加只需室溫操作即可；

2）細胞在試劑中停留不超20min，混合好盡快開始實驗；

3）轉(zhuǎn)染的底物占比不能大于總體積的10%，比如轉(zhuǎn)染體系100ul，底物最多添加10ul；

4）在消化的細胞進行配置時，一定要離心并wan全去除殘留培養(yǎng)基；

5）在加入到電極杯中時，要避免產(chǎn)生氣泡，從而影響電脈沖；

6）對底物進行內(nèi)毒素控制；

7）轉(zhuǎn)染試劑與底物濃度配比控制；

8）如果是mRNA轉(zhuǎn)染，可多洗滌2次。

3.程序設(shè)置：

1）使用Lonza電轉(zhuǎn)儀，程序已經(jīng)設(shè)定好，可以根據(jù)不同的細胞名稱，選擇對應(yīng)的優(yōu)程序； 根據(jù)實際情況，可以對程序進行微調(diào)，確保轉(zhuǎn)染效率和細胞存活率。

2）使用需要自行設(shè)置的儀器，一般電場強度設(shè)置遵循低電場、長時程的原則。

4.細胞重懸：

1）轉(zhuǎn)染結(jié)束之后，可以先停留10min再加培養(yǎng)基重懸；

2）使用無鈣培養(yǎng)基重懸，5-10min后轉(zhuǎn)移細胞到培養(yǎng)皿上；

3）后續(xù)的實驗一般在轉(zhuǎn)染后24h再進行；

4）電轉(zhuǎn)后的細胞，鋪板數(shù)量翻一倍。

5.轉(zhuǎn)染后細胞的培養(yǎng)：選擇表達高峰期細胞做實驗，推薦文獻可在Lonza查詢。