糖原磷酸化酶 a（Glycogen phosphorylase a，GPa）試劑盒說明書

微量法 100 管/96 樣

糖原磷酸化酶a試劑盒

正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定測定意義：

糖原磷酸化酶（Glycogen phosphorylase，GP，EC 2.4.1.1)）是糖原分解代謝的關(guān)鍵酶，使糖原分子從非還原端逐個斷開α-1，4-糖苷鍵移去葡萄糖基，釋放 1-磷酸葡萄糖，直至臨近糖原分子α-1，6-糖苷鍵分支點前 4 個葡萄糖基處。GP 分為有活性的糖原磷酸化酶 a（GPa）和無活性的糖原磷酸化酶 b（GPb）兩種形式。糖原的分解主要在 GPa 的催化下進行。

測定原理：

未添加激活劑時，GPa 催化糖原和無機磷產(chǎn)生葡萄糖殘基生成糖原和 1-磷酸葡萄糖，磷酸葡萄糖變位酶和 6-磷酸葡萄糖脫氫酶進一步依次催化 NADP 還原生成NADPH，在 340nm 下測定NADPH 上升速率，即可反映GPa 活性。

組成：

自備儀器和用品：

紫外分光光度計/酶標儀、臺式離心機、可調(diào)式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研缽、冰和蒸餾水。

樣本的前處理：

按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

測定步驟：

1、分光光度計或酶標儀預(yù)熱 30min 以上，調(diào)節(jié)波長至 340nm，蒸餾水調(diào)零；

2、工作液的配制：臨用前將試劑二轉(zhuǎn)移到試劑一中混合溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融。

3、試劑三的配制：臨用前在試劑三管中加入 1ml 蒸餾水充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融。

4、試劑四的配制：臨用前在試劑四管中加入 1ml 蒸餾水充分溶解待用；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融。

5、將工作液、試劑三和試劑四置于 37℃預(yù)熱 5 分鐘；

6、在微量石英比色皿或 96 孔板中加入 10μl 樣本、10μl 試劑三、10μl 試劑四、10μl 蒸餾水和 160μl 工作液，立即混勻，記錄 340nm 處 5min 后的A1 和 10min 后的吸光值A(chǔ)2，計算ΔA=A2-A1。

GPa 活性計算：

用微量石英比色皿測定的計算公式如下：

按樣本蛋白濃度計算

單位定義：每mg 組織蛋白每分鐘產(chǎn)生 1nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。

GPa（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=643×ΔA÷Cpr

按樣本鮮重計算

單位定義：每g 組織每分鐘產(chǎn)生 1nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。

GPa（nmol/min/g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W ×V 樣÷V 樣總)÷T=643×ΔA÷W

V 反總：反應(yīng)體系總體積，2×10-4 L；ε：NADPH 摩爾消光系數(shù)，6.22×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑， 1cm；V 樣：加入樣本體積，0.01 ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應(yīng)時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g。

用 96 孔板測定的計算公式如下：

按樣本蛋白濃度計算

單位定義：每mg 組織蛋白每分鐘產(chǎn)生 1nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。

GPa（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=1286×ΔA÷Cpr

按樣本鮮重計算

單位定義：每g 組織每分鐘產(chǎn)生 1nmol NADPH 定義為一個酶活力單位。

GPa（nmol/min/g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W ×V 樣÷V 樣總)÷T=1286×ΔA÷W

V 反總：反應(yīng)體系總體積，2×10-4 L；ε：NADPH 摩爾消光系數(shù)，6.22×103 L / mol /cm；d：96 孔板光徑， 0.5cm；V 樣：加入樣本體積，0.01 ml；V 樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應(yīng)時間，5 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g。

糖原磷酸化酶a試劑盒