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DNA為基礎(chǔ)的方法檢測飼料中的動物源性成分

來源:上海源葉生物科技有限公司   2010年11月02日 09:14  

以檢測DNA為基礎(chǔ)的方法主要有核酸探針雜交、DNA指紋分析、PCR-RFLP分析、PCR特異擴增(常規(guī)PCR方法和Real-time PCR方法)。其主要原理都是對各物種內(nèi)特異的核酸序列進(jìn)行提取、鑒定,從而判定飼料內(nèi)有無該物種的成分,只是結(jié)果判別的信號條件不同。

核酸探針雜交方法的原理是堿基配對,即一條DNA鏈能與它的特異互補鏈配對形成雙鏈DNA。因此,用一個熒光物質(zhì)或放射性物質(zhì)標(biāo)記的單鏈核苷酸探針能夠很快地從許多其他DNA分子的混合物中檢測出它的互補單鏈。由于雜交探針需要用熒光物質(zhì)或放射性物質(zhì)進(jìn)行標(biāo)記,所以該法在實際檢測中很少應(yīng)用。

動物基因組中存在大量的分散重復(fù)序列(interspersedrepeat sequence,IRS),并且是種間高度特異的,DNA指紋分析就是通過用哺乳動物中廣泛存在的分散重復(fù)序列的特異引物進(jìn)行PCR擴增,建立從牛到鴕鳥的30多種哺乳動物的DNA指紋圖譜,來對飼料中的動物源性成分的DNA進(jìn)行鑒定。由于DNA指紋有一定難度,所以該法在實際檢測中也較少應(yīng)用。

PCRRFLP(限制性內(nèi)切酶多態(tài)性分析)方法是用引物進(jìn)行擴增,然后對擴增片段用限制性內(nèi)切進(jìn)行酶切,利用限制性內(nèi)切酶的多態(tài)性進(jìn)行檢測。由于使用的限制性內(nèi)切酶對PCR產(chǎn)物進(jìn)行限制性內(nèi)切酶切分析不方便,所以該法在實際檢測中應(yīng)用較少。

PCR特異擴增方法由于其簡單、快速、特異性強成為目前zui廣泛應(yīng)用的方法,特別是熒光PCR(或稱為Real-timePCR)的應(yīng)用使得檢測的特異性和敏感性更高。Tartaglia*次設(shè)計了PCR試驗,將其用于肉骨粉以及飼料中的反芻動物源性成分的檢測。他所選的目標(biāo)片斷是線粒體DNA中編碼tRNAlys和ATP合成酶8亞基和6亞基的片段,高等植物中未發(fā)現(xiàn)其同源序列,采用異硫氰酸胍和二氧化硅方法提取DNA,肉骨粉的檢出的含量的zui低限為0.125%,我國的出入境檢驗檢疫系統(tǒng)根據(jù)該方法制定了檢測肉骨粉中牛源性、羊源性成分的行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)。

但是,隨后對PCR方法的驗證發(fā)現(xiàn)這一方法有其缺陷,因為加工過程中的熱處理使得大量DNA被嚴(yán)重降解,分解成小片段,有數(shù)據(jù)表明當(dāng)肉被加熱到100~C時,其中的DNA就被降解到1100bp至300bp左右。若設(shè)計的目的片段太長則可能無法擴增出來,這在許多人的報道中被證實。因此,需要設(shè)計比較小的目的片段,同時要選擇細(xì)胞內(nèi)含量比較多的目標(biāo)片段。目前所建立的PCR方法中以線粒體DNA中的細(xì)胞色素b與tRNAlysATP合成酶亞基8和亞基6的片段為目標(biāo)區(qū)域的較多,線粒體基因的其他部分(如D—loop區(qū)域),還有其他核酸序列(如衛(wèi)星DNA、actln基因、SINEs序列和LINEs序列、生長素基因等)也被作為檢測的目的基因。

線粒體編碼的長度為60-70bp的片段已經(jīng)被作為一些物種的目標(biāo)片段進(jìn)行檢測,由于這些片段比較小,用瓊脂糖電泳檢測非常不方便,但用熒光PCR檢測可以避免這些問題。Real—tmmPCR中使用的TaqMan技術(shù)是在引物的基礎(chǔ)上又添加了一條探針,只有在探針與擴增出的目標(biāo)片段結(jié)合時,才發(fā)出熒光信號,可以根據(jù)發(fā)出的熒光對反應(yīng)進(jìn)行實時檢測,比經(jīng)典的PCR方法特異性高,這是因為有引物和探針對目標(biāo)進(jìn)行雙重篩選。有資料表明用這項技術(shù)對幾種動物成分進(jìn)行了檢測,在所有樣品中動物的成分都可清楚地檢測到,這一結(jié)果說明,肉骨粉經(jīng)過加工后,即使溫度達(dá)到141~C,也有足夠的DNA可通過Real—time PCR技術(shù)檢測到,而當(dāng)目標(biāo)片段設(shè)計為275bp或350bp時,所有的樣品都檢測不到。同時對于目前的定性檢測,利用不同的探針和染料可以做到一個反應(yīng)內(nèi)檢測多個動物品種。

PCR方法在檢測大多數(shù)生產(chǎn)條件下生產(chǎn)的飼料,至少在歐盟法定的條件下生產(chǎn)的肉骨粉是有效的,但生產(chǎn)過程的多樣性導(dǎo)致了基因物質(zhì)的不同降解水平,因此不同的生產(chǎn)條件都會對檢測結(jié)果產(chǎn)生影響,擴增的片段大小也會對檢測的靈敏度產(chǎn)生影響。PCR的缺點還表現(xiàn)在必須的刻防止交叉污染,并且這個方法無法檢測動物DNA的來源,因為肉骨粉的出現(xiàn)與陽性信號的出現(xiàn)并無直接關(guān)系,乳汁、血液、脂肪都有可能是DNA的來源。PCR方法相對來說是一種比較昂貴的方法,不僅試劑貴而且也需要比較昂貴的儀器,特別是熒光PCR儀。
 

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