植物α-淀粉酶(α-amylase,α-AL)試劑盒說明書
可見分光光度法 規(guī)格:50管/24樣
產(chǎn)品內(nèi)容:
試劑一:25mL×1 瓶,常溫保存,若有黃色晶體析出,需加熱溶解后再用;
試劑二:20mL×1 瓶,4℃保存。
產(chǎn)品簡(jiǎn)介:
淀粉酶負(fù)責(zé)水解淀粉,包括α-淀粉酶和β-淀粉酶。α-淀粉酶(EC 3.2.1.1)可隨機(jī)地作用于淀粉中的α-1,4-糖苷鍵,生成葡萄糖、麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原糖,同時(shí)使淀粉的粘度降低,因此又稱為液化酶。
還原糖還原3,5-二硝基水楊酸生成棕紅色物質(zhì)。β-淀粉酶不耐熱,在70℃鈍化15min,從而測(cè)定α-淀粉酶活性。
試驗(yàn)中所需的儀器和試劑:
可見分光光度計(jì)、恒溫水浴鍋、臺(tái)式離心機(jī)、可調(diào)式移液器、玻璃比色皿、研缽和蒸餾水。
操作步驟:
一、粗酶液提取:
稱取0.1~0.2g 樣本(建議稱取約0.1g 樣本),加1 mL 蒸餾水勻漿;將勻漿倒入離心管中,在室溫下放置提取15min,每隔5min 振蕩1 次,使其充分提取;3000g,25℃離心10min,吸取上清液并且加蒸餾水定容至10 mL,搖勻,即為淀粉酶原液。
- 操作步驟和加樣表(在1.5mLEP 管中依次加入下列試劑):
分光光度計(jì)預(yù)熱30min 以上,調(diào)節(jié)波長到540 nm,蒸餾水調(diào)零。
1、β-淀粉酶滅活:
試劑(μL) | 對(duì)照管 | 測(cè)定管 |
α-淀粉酶原液 | 250 | 250 |
70℃水浴15min 左右,冷卻
2、加入試劑一并且保溫:
試劑一 | 500 |
|
將以上對(duì)照管、測(cè)定管和試劑二置于40℃恒溫水浴中保溫10min左右。
3、準(zhǔn)確反應(yīng)5min
試劑二 | 250 | 250 |
在40℃恒溫水浴中準(zhǔn)確保溫5min
4、加入試劑一,并且混勻
試劑一 |
| 500 |
混勻,95℃水浴5min,冷卻,540nm 處讀取對(duì)照管和測(cè)定管吸光度,計(jì)算ΔA=A 測(cè)定管-A 對(duì)照管。
三、α-淀粉酶活性計(jì)算:
1、標(biāo)準(zhǔn)條件下測(cè)定回歸曲線為y=3.7215x -0.1778; x 為標(biāo)準(zhǔn)品濃度(mg/mL),y 為吸光值。
2、α-淀粉酶活性
(1)按照樣本質(zhì)量計(jì)算
單位定義:每g 組織每分鐘催化產(chǎn)生1mg 還原糖定義為1 個(gè)酶活力單位。
α- 淀粉酶活性(mg/min/g 鮮重)=[(ΔA+0.1778)÷3.7215×V 反總]÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T
=1.075×(ΔA+0.1778)÷W
(2)按照蛋白質(zhì)含量計(jì)算
單位定義:每mg 組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生1mg 還原糖定義為1 個(gè)酶活性單位。
α-淀粉酶活性(mg/min/mg prot)= [(ΔA+0.1778)÷3.7215×V 反總]÷(V 樣×Cpr)÷T
=0.1075×(ΔA+0.022) ÷Cpr
V 反總:反應(yīng)體系總體積,0.5mL;V 樣:加入反應(yīng)體系中樣本體積,0.25 mL;V 樣總:提取液總體積,10 mL; Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g;T:反應(yīng)時(shí)間,5min。
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