Bradford法總蛋白含量測(cè)試試劑盒分光光度計(jì)法使用說明
Bradford法總蛋白含量測(cè)試試劑盒
(C003-100T 分光光度計(jì)法)
一、測(cè)定原理
在酸性溶液中,考馬斯亮藍(lán)G250(Coomassie brilliant blue G250)染料主要與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸(特別是精氨酸和賴氨酸)和芳香族氨基酸的殘基通過疏水力相結(jié)合,從而使染料的大吸收峰由波長(zhǎng)465nm變?yōu)椴ㄩL(zhǎng)595nm,溶液的顏色由棕紅色變?yōu)樗{(lán)色。在一定蛋白濃度范圍內(nèi),溶液在波長(zhǎng)595nm處的吸光度與蛋白質(zhì)濃度呈線性關(guān)系。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,就可通過測(cè)定樣品在波長(zhǎng)595nm的吸光度計(jì)算樣品的蛋白質(zhì)濃度;然后根據(jù)公式計(jì)算生物樣品的可溶性蛋白質(zhì)含量。
二、試劑組成
試劑一:顯色液 200ml×2瓶
試劑二:2.5mg/ml結(jié)晶牛血清蛋白(BSA)標(biāo)準(zhǔn)品,0.5ml×1瓶
三、儲(chǔ)存條件及有效期
試劑一:4℃避光保存;試劑二-20℃保存??杀4?2個(gè)月。
四、試劑的配制
標(biāo)準(zhǔn)品的配制:在試劑二瓶中加入4.5mL雙蒸水,充分混勻,得到5ml濃度為250μg/ml的標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液。分別移取0,100,200,300,400,600,800,1000μL于空試管中,加入1000,900,800,700,600,400,200,0μL雙蒸水,得到0,25,50,75,100,150,200,250μg/ml的BSA標(biāo)準(zhǔn)品應(yīng)用液。
五、操作步驟
六、計(jì)算方法
1. 繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線
以標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液濃度0,25,50,75,100,150,200,250μg/ml為橫坐標(biāo),以酶標(biāo)儀測(cè)得的吸光值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線并得到方程,一般認(rèn)為相關(guān)系數(shù)(R2)大于0.99可用。實(shí)測(cè)得標(biāo)準(zhǔn)曲線如下:
2. 計(jì)算樣品濃度
由計(jì)算得到的方程求樣品濃度。
七、注意事項(xiàng)
1. 染色液接觸皮膚后較難清洗,請(qǐng)務(wù)必戴手套操作。本實(shí)驗(yàn)用過的比色皿及試管請(qǐng)?jiān)趯?shí)驗(yàn)結(jié)束后盡快使用酒精清洗,避免比色皿被染色。
2. 本方法靈敏度高,可以測(cè)定低至25μg/mL的蛋白質(zhì)濃度,蛋白濃度過高會(huì)超出標(biāo)準(zhǔn)曲線線性范圍,務(wù)必稀釋后測(cè)定。推薦標(biāo)曲范圍0-250μg/mL,但實(shí)測(cè)0-500μg/mL濃度范圍內(nèi)標(biāo)曲相關(guān)系數(shù)通常能夠達(dá)到要求以上。具體范圍請(qǐng)用戶根據(jù)標(biāo)曲制作情況判斷。
3. Bradford法測(cè)定蛋白濃度不受一般濃度還原型試劑如β-巰基乙醇、二硫蘇糖醇(DTT)影響;但受去垢劑影響。如樣品處理時(shí)加入過SDS、Triton X-100、Tween 等試劑,建議改用其它方法如BCA法測(cè)定。
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