電轉,也稱電穿孔法,是通過脈沖電流在細胞膜上打孔,將外源分子(DNA、RNA 、mRNA等)導入真核細胞內,來改變細胞的特性,從而達到改造細胞的目的,是實現(xiàn)細胞基因功能和蛋白質表達研究的重要工具。那么該如何提高電轉效率呢?讓我們一起來看看吧!
一、細胞收集時:
1)在消化貼壁細胞時,一定要注意終止胰酶反應,防止過度消化;最好使用專業(yè)的胰酶中和劑;
2)在進行細胞離心時,使用低轉速長時間離心,提升細胞的存活率;
3)選擇合適狀態(tài)的細胞,一般原代細胞可以傳1-2次后使用;盡量挑選迭代次數(shù)少的細胞,如果是凍存細胞,建議復蘇1-2h后使用;
4)選擇對數(shù)增長期的細胞;
5)做好支原體清除。
二、試劑添加:
1)電轉試劑的添加只需室溫操作即可;
2)細胞在試劑中停留不超20min,混合好盡快開始實驗;
3)轉染的底物占比不能大于總體積的10%,比如轉染體系100ul,底物最多添加10ul;
4)在消化的細胞進行配置時,一定要離心并完quan去除殘留培養(yǎng)基;
5)在加入到電極杯中時,要避免產(chǎn)生氣泡,從而影響電脈沖;
6)對底物進行內毒素控制;
7)轉染試劑與底物濃度配比控制;
8)如果是mRNA轉染,可多洗滌2次。
三、程序設置:
1)使用電轉儀,程序已經(jīng)設定好,可以根據(jù)不同的細胞名稱,選擇對應的最you程序;根據(jù)實際情況,可以對程序進行微調,確保轉染效率和細胞存活率。
2)使用需要自行設置的儀器,一般電場強度設置遵循低電場、長時程的原則。
四、細胞重懸:
1)轉染結束之后,可以先停留10min再加培養(yǎng)基重懸;
2)使用無鈣培養(yǎng)基重懸,5-10min后轉移細胞到培養(yǎng)皿上;
3)后續(xù)的實驗一般在轉染后24h再進行;
4)電轉后的細胞,鋪板數(shù)量翻一倍。
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