概述

在類器官的培養(yǎng)過(guò)程中，如果我們想了解類器官的增殖及凋亡狀態(tài)，可以通過(guò)對(duì)活細(xì)胞和死細(xì)胞進(jìn)行熒光染色，通過(guò)熒光顯微鏡拍照觀察。

Calcein-AM是一種對(duì)活細(xì)胞進(jìn)行熒光標(biāo)記的細(xì)胞染色試劑，發(fā)綠色熒光 (Ex=490nm, Em=515nm)。因其在傳統(tǒng)的Calcein（鈣黃綠素）基礎(chǔ)上引入乙酰甲氧基甲酯(AM)基團(tuán)，增加了疏水性，使其能夠輕易穿透活細(xì)胞膜。一旦進(jìn)入細(xì)胞后，Calcein-AM（本身不發(fā)熒光）被細(xì)胞內(nèi)的酯酶剪切形成膜非滲透性的極性分子Calcein，從而被滯留在細(xì)胞內(nèi)并發(fā)出強(qiáng)綠色熒光。與其它同類試劑（如BCECF-AM和CFDA)相比，由于Calcein-AM細(xì)胞毒性極低，是很適合用于活細(xì)胞染色的熒光探針，而且不會(huì)抑制任何的細(xì)胞功能，如增殖和淋巴球的趨化性。        

由于死細(xì)胞缺乏酯酶，Calcein-AM僅用于對(duì)活細(xì)胞的細(xì)胞生存能力測(cè)試和短期標(biāo)記。因此，Calcein-AM常常與死細(xì)胞熒光探針如碘化丙啶(PI)等聯(lián)合使用，同時(shí)進(jìn)行活細(xì)胞和死細(xì)胞的熒光雙重染色。碘化丙啶(Propidium iodide, PI)不能穿過(guò)活細(xì)胞的細(xì)胞膜，僅能穿過(guò)死細(xì)胞膜的無(wú)序區(qū)域而到達(dá)細(xì)胞核，并嵌入細(xì)胞的DNA雙螺旋從而產(chǎn)生紅色熒光(Ex=535nm, Em=617nm)，因此PI僅對(duì)死細(xì)胞染色。由于Calcein和PI-DNA都可被490nm激發(fā)，因此可用熒光顯微鏡同時(shí)觀察活細(xì)胞和死細(xì)胞。而用545nm激發(fā)，僅可觀察到死細(xì)胞。

原理

本試劑盒的工作原理就在于Calcein-AM和PI的雙重染料，來(lái)進(jìn)行活細(xì)胞和死細(xì)胞的雙重染色標(biāo)記，從而進(jìn)行活細(xì)胞和死細(xì)胞水平的分析。根據(jù)我司優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)體系，以24孔板，每孔25uL類器官基質(zhì)膠凝聚物為例，每孔添加500uL染色工作液進(jìn)行染色。

活細(xì)胞/死細(xì)胞雙染試劑盒(abs50056)

實(shí)驗(yàn)步驟

一、工作液的配制：

1、1×Assay Buffer（反應(yīng)緩沖液）的配制 從低溫冰箱內(nèi)取出10×Assay Buffer，根據(jù)單次用量無(wú)菌條件取出適量，用去離子水(dH₂O)做10倍稀釋以得到1×Assay Buffer。

2、1×染色工作液的配制

（1）先將低溫保存的Calcein-AM溶液(2mM)和PI溶液(1.5mM)回到室溫20-30min。 注意：第一次使用可對(duì)母液進(jìn)行分裝，以減少反復(fù)凍融次數(shù)。

（2）取5μL Calcein-AM溶液(2mM)和15μL PI 溶液(1.5mM)加入5mL 1×Assay Buffer，充分混勻。此時(shí)得到Calcein-AM的工作液濃度為2μM，PI的工作液濃度為4.5μM。

注意：由于不同種類器官的最佳染色條件不同，初次實(shí)驗(yàn)建議做梯度實(shí)驗(yàn)，以確定Calcein-AM和PI的最適濃度。梯度篩選的原則為使用min的探針濃度得到較好的熒光結(jié)果。可以使用以下方法來(lái)優(yōu)化得到兩種熒光染料的最佳工作濃度。

a. 用0.1%皂素或者0.1-0.5%digoxin孵育類器官1h，或者用70%乙醇孵育類器官1h，從而制備死類器官；

b. 用0.1-10μM的PI溶液進(jìn)行死類器官染色，以得到僅僅對(duì)細(xì)胞核染色，而不會(huì)對(duì)細(xì)胞質(zhì)染色的最佳工作濃度；

c. 用0.1-10μM的Calcein-AM進(jìn)行死類器官染色，以得到不會(huì)對(duì)細(xì)胞質(zhì)染色的最佳工作濃度。然后用此濃度進(jìn)行活細(xì)胞染色，去觀察活細(xì)胞是否能被染色。

二、染色步驟：

 以24孔板，每孔25uL類器官基質(zhì)膠凝聚物為例，檢測(cè)時(shí)只需棄除類器官培養(yǎng)液，保留孔板內(nèi)25μL類器官基質(zhì)膠凝聚物，加入染色工作液即可。

1、將類器官培養(yǎng)基吸棄，加入PBS清洗2-3遍，以充分去除殘留的酯酶活性，然后棄除PBS；

2、每孔加入500μL染色工作液，混勻，37℃孵育1h；

3、熒光顯微鏡下使用490±10nm激發(fā)濾片同時(shí)檢測(cè)活細(xì)胞（黃綠色熒光）以及死細(xì)胞（紅色熒光）。另外，使用545nm的發(fā)射濾片僅能觀察到死細(xì)胞。也可以直接在熒光酶標(biāo)儀下使用合適的濾片進(jìn)行檢測(cè)。

注意事項(xiàng)

1、由于Calcein-AM對(duì)濕度非常敏感，若是Calcein-AM溶液每次取完需要量后，必須緊緊密封蓋子。建議根據(jù)單次用量，分裝密封保存。

2、由于Calcein-AM的穩(wěn)定性比較差，此染色工作液必須現(xiàn)配現(xiàn)用，并且在當(dāng)天用完。

3、碘化丙啶(PI)有一定的致癌性，操作時(shí)一定要注意防護(hù)。若接觸到皮膚，需要立即用自來(lái)水清洗。

4、為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。

染色效果圖展示

一、人肝細(xì)胞癌類器官明場(chǎng)圖

人肝細(xì)胞癌類器官擴(kuò)增過(guò)程（由少到多）

二、人肝細(xì)胞癌類器官活死染色視頻

三、人肝細(xì)胞癌類器官活死染色圖

人肝細(xì)胞癌類器官活細(xì)胞、死細(xì)胞、活死細(xì)胞染色合并圖

人肝細(xì)胞癌類器官活死細(xì)胞染色合并圖

今天講解就到這了，大家如有實(shí)驗(yàn)問(wèn)題，歡迎私聊交流哦！

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