永生化小鼠施萬細胞簡介

永生化小鼠施萬細胞（如 IMS32）是從 ICR 小鼠大腦中分離得到的，具有貼壁、紡錘形生長特性，可通過自然永生化等方式獲得。其能表達膠質(zhì)細胞標記物（如 S100、GFAP、p75NTR）、參與施萬細胞發(fā)育和周圍髓鞘形成過程中的轉(zhuǎn)錄因子（如 Krox20、Oct6、PAX3 和 SOX10），以及神經(jīng)營養(yǎng)因子（如 NGF、BDNF、GDNF 和 CNTF）。

培養(yǎng)基的配制與選擇

• 基礎(chǔ)培養(yǎng)基 ：常用 PriCoat™ T25 燒瓶或應用細胞外基質(zhì)以促進細胞粘附，培養(yǎng)基為 PriGrow III + 10% FBS + 1% 青霉素 / 鏈霉素溶液，培養(yǎng)條件為 37℃、5% CO?。

• 無血清培養(yǎng)基 ：也可采用無血清培養(yǎng)基進行培養(yǎng)，需根據(jù)細胞類型和實驗需求進行優(yōu)化調(diào)整。

細胞的復蘇與凍存

• 細胞復蘇 ：收到凍存細胞后，檢查凍存管是否有解凍破損現(xiàn)象。將凍存管放入 37℃水浴中快速融化，一般 1 分鐘左右。然后將細胞懸液轉(zhuǎn)移至離心管，用培養(yǎng)液稀釋后低速離心 3-10 分鐘，去除上清，加入新鮮培養(yǎng)液后培養(yǎng)。收到培養(yǎng)細胞時，用 75% 酒精噴灑細胞瓶消毒，放置培養(yǎng)箱靜置 2-4 小時穩(wěn)定細胞狀態(tài)，之后顯微鏡下觀察細胞生長情況并拍照記錄。

• 細胞凍存 ：選擇狀態(tài)良好的細胞，消化后制成單細胞懸液，按凍存數(shù)量加入含 5% DMSO 的凍存液，輕輕混勻后分裝于凍存管，放入 - 80℃冰箱中，24 小時后轉(zhuǎn)入液氮罐保存。

細胞的傳代

當細胞密度達到 80% 左右時，即可進行傳代。傳代步驟如下：

1. 棄去培養(yǎng)上清，用不含鈣、鎂離子的 PBS 潤洗細胞 1-2 次。

2. 加入 0.25%Trypsin-0.53mM EDTA 消化液，放入培養(yǎng)箱消化 1-2 分鐘，顯微鏡下觀察細胞，若細胞大部分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲培養(yǎng)瓶后，加含 10% 血清的培養(yǎng)基終止消化。

3. 輕輕吹打細胞，使其全脫落，吸出至離心管，1000rpm 離心 5-8 分鐘，棄去上清，補加培養(yǎng)基吹勻。

4. 按 1:2 至 1:4 的比例，將細胞懸液分到新的培養(yǎng)瓶中，加入適量培養(yǎng)基，放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。

細胞培養(yǎng)的觀察與記錄

• 肉眼觀察 ：主要觀察培養(yǎng)基的顏色變化及細胞生長情況。若培養(yǎng)基顏色變黃、變渾濁等，可能提示細胞狀態(tài)不佳或受到污染。

• 顯微鏡觀察 ：定期在倒置顯微鏡下觀察細胞的形態(tài)、生長狀態(tài)等。正常的永生化小鼠施萬細胞呈紡錘形，立體感強，伸出雙極、三極長而纖細的突起彼此交織成網(wǎng)絡。

細胞培養(yǎng)的污染與防治

• 污染種類 ：常見的有細菌、酵母菌、霉菌和病毒等污染。

• 預防方法 ：嚴格無菌操作技術(shù)，如在超凈工作臺內(nèi)進行操作、使用無菌器械和試劑等；保持操作環(huán)境清潔；使用良好的細胞來源和培養(yǎng)基配制。

• 檢測與處理 ：可通過肉眼直接觀察法、培養(yǎng)檢查法、顯微鏡觀察法、PCR 檢測等方法檢測污染。一旦發(fā)現(xiàn)污染，應及時采取相應的處理措施，如丟棄培養(yǎng)物、使用抗生素等。