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EMSA凝膠遷移

來(lái)源:上海北諾生物科技有限公司   2015年05月15日 09:06  

實(shí)驗(yàn)原理


凝膠遷移或電泳遷移率實(shí)驗(yàn)(EMSA)是一種研究DNA結(jié)合蛋白和其相關(guān)的DNA結(jié)合序列相互作用的技術(shù),可用于定性和定量分析。這一技術(shù)zui初用于研究DNA結(jié)合蛋白,目前已用于研究RNA結(jié)合蛋白和特定的RNA序列的相互作用。

通常將純化的蛋白和細(xì)胞粗提液和32P同位素標(biāo)記的DNA或RNA探針一同保溫,在非變性的聚丙烯凝膠電泳上,分離復(fù)合物和非結(jié)合的探針。DNA-復(fù)合物或RNA-復(fù)合物比非結(jié)合的探針移動(dòng)得慢。同位素標(biāo)記的探針依研究的結(jié)合蛋白的不同,可是雙鏈或者是單鏈。當(dāng)檢測(cè)如轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子一類的DNA結(jié)合蛋白,可用純化蛋白,部分純化蛋白,或核細(xì)胞抽提液。在檢測(cè)RNA結(jié)合蛋白時(shí),依據(jù)目的RNA結(jié)合蛋白的位置,可用純化或部分純化的蛋白,也可用核或胞質(zhì)細(xì)胞抽提液。競(jìng)爭(zhēng)實(shí)驗(yàn)中采用含蛋白結(jié)合序列的DNA或RNA片段和寡核苷酸片段(特異),和其它非相關(guān)的片段(非特異),來(lái)確定DNA或RNA結(jié)合蛋白的特異性。在競(jìng)爭(zhēng)的特異和非特異片段的存在下,依據(jù)復(fù)合物的特點(diǎn)和強(qiáng)度來(lái)確定特異結(jié)合。 


錨點(diǎn)

實(shí)驗(yàn)試劑


重要試劑:

Boitin-N4-CTP           (invitrogen    # 15918-18)

TdT                          (NEB        # M0252L)

Poly(dI.dC)               (sigma       #P4929)

Hybond-N 尼龍膜       (Amersham   #RPN303B)

發(fā)光底物                    (寧波    唯奧)

緩沖液:

Buffer A  (store at 4℃)

Hepes  (pH7.9)                  10mM

KCl                                    10mM

EDTA                                0.1mM

DTT(fresh added)                 1mM

PMSF(fresh added)            0.5mM


Buffer B (store at 4℃)

0.5M EDTA in PBS (pH7.4)


Buffer C  (store at 4℃)

Hepes  (pH7.9)                 20mM

NaCl                                  0.4M

EDTA                                 1mM

DTT(fresh added)                1mM

PMSF(fresh added)              1mM


Buffer I  (store at RT)

Tris (pH7.5)             0.1M

NaCl                           1M

MgCl2                       2mM    


Buffer II (pH7.5) (store at RT)

馬來(lái)酸                     100mM

NaCl                       150mM


Buffer III  (store at RT)

Tris(pH9.5)              100mM

NaCl                        100mM

MgCl2                        50mM


Blocking Buffer (store at 4℃)

0.3%Tween-20, 0.3%Triton X-100, 5%BSA in Buffer I


Wash Buffer

0.3%Tween-20 in Buffer II


20×SSC (1L  pH7.0)

NaCl                 175.3g

檸檬酸鈉              88.2g

10×Binding Buffer (store at -20℃) [在公司(碧云天)購(gòu)買:5×binding buffer,內(nèi)含Poly(dI.dC)]

Tris (pH7.5)                  0.1M

KCl                               0.5M

DTT                            10Mm


Poly(dI.dC) (store at -20℃)

1mg/ml in  TE (pH7.5)


SA-HRP(儲(chǔ)存液store at -20℃ 工作液store at 4℃)

1mg/ml in  50%PBS (pH7.2) 50%Glycerin


5×TBE  (5L)

EDTA                         18.612g

硼酸                       139.1175g

Tris                         272.565g

  

5×TdT Reaction Buffer (store at -20℃) (pH7.2)

Sodium cacodylate              0.5M

CoCl2                               10mM        

TCEP                                  1mM


Biotin-N4-CTP (store at -20℃)

Biotin-N4-CTP               50mM

Tris (pH7.5)                  10mM            

EDTA                              1mM




錨點(diǎn)

實(shí)驗(yàn)步驟


生物素標(biāo)記探針:
1. 按如下順序加入反應(yīng)物,溫和混勻,切勿渦漩    

超純水                                   25μl

5×TdT Reaction Buffer           10μl

探針(1μM)                               5μl

Biotin-N4-CTP                         5μl

TdT (2U/μl)                             5μl

37℃反應(yīng)30分鐘

2. 加入2.5μl 0.2M EDTA終止反應(yīng);

3. 加入50μl 酚:氯仿,短暫渦漩,15000g離心2min,保留上層水相,-20℃保存;

4. 結(jié)合反應(yīng)前等體積混合兩條標(biāo)記引物,90℃退火引物,并自然冷卻至4℃,待用。

 

抽提核蛋白:

1. 2~3×106密度鋪60mm細(xì)胞培養(yǎng)板,培養(yǎng)約12h;

2. 移去細(xì)胞培養(yǎng)基,PBS洗細(xì)胞一次;

3. 加入1mL Buffer B 于培養(yǎng)板,將細(xì)胞刮下收集于1.5mL離心管;

4. 1000g 離心2min,吸去上清;

5. 加入160μl Buffer A,重懸沉淀,冰育20min;

6. 加入含2.5%NP-40的Buffer A,渦漩10s,4℃ 15000g 離心5min;

7. 吸去上清,加入40μl Buffer C,4℃渦漩25min,4℃ 18000g 離心5min;

8. 吸取2μl上清采用Bradford法測(cè)蛋白質(zhì)濃度,其余儲(chǔ)存于-80℃。



配置非變性聚丙烯酰胺凝膠(以6%濃度為例)

5×TBE                         1mL

30%Ac-Bi                     2mL

40%Glycerin(甘油)   625μL

DDW (雙蒸水)      6.125mL

10%AP                      150μL

10%TEMED                100μL

以預(yù)冷為4℃的0.5×TBE為電泳緩沖液,100V預(yù)電泳30-60min(時(shí)間不定,跑到溴酚藍(lán)占整塊膠的三分之二處)


EMSA(參考PIERCE公司試劑盒)

1. 特異性的證明

使用的探針序列需證明其是否與目的蛋白特異性結(jié)合,確定目的條帶的位置。

按照“步驟”中的體系,做以下四組平行結(jié)合實(shí)驗(yàn):

(在加入ddw,10×binding buffer,Poly(dI.dC)的基礎(chǔ)上)

 1) 生物素標(biāo)記的探針

 2) 蛋白質(zhì)粗提物

 3) 蛋白質(zhì)粗提物+200倍濃度的非標(biāo)記的同種探針(即冷探針)

 4) 蛋白質(zhì)粗提物+200倍濃度的非標(biāo)記的突變探針(可以設(shè)計(jì)多種突變類型的探針,看是否能競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合)

 5) 蛋白質(zhì)粗提物+抗體

室溫反應(yīng)10min,然后加入生物素標(biāo)記的探針;

室溫繼續(xù)反應(yīng)20min,做EMSA檢測(cè)。

結(jié)果分析,如果出現(xiàn)如下實(shí)驗(yàn)結(jié)果

1) 顯示游離探針位置

2) 顯示游離探針位置和遷移帶位置

3) 只有游離帶,沒(méi)有遷移帶

4) 和2)帶型一致

則證明探針與目的蛋白為特異性結(jié)合。


步驟:

1. 按如下順序加入反應(yīng)物,溫和混勻(20μl體系)

    ddw                             ――

    10×binding buffer         2μl

    Poly(dI.dC)                   1μl    (以上文字已說(shuō)明由公司定)

    核蛋白粗提物                  4-10μg(溫和混勻)

    生物素標(biāo)記的探針            0.5μl

室溫反應(yīng)20min,加入6×Loading Buffer (TAKARA) 4μl,上樣10-20μl,100V電泳至溴酚藍(lán)于三分之二處。


2. 電轉(zhuǎn)前將尼龍膜浸泡于0.5×TBE至少10min

以預(yù)冷的0.5×TBE為電轉(zhuǎn)緩沖液100V轉(zhuǎn)膠于尼龍膜上,45min。

3. UV BOX下,以貼近膜一面面向紫外光源,以254nm激發(fā)光交聯(lián)15min(紫外交聯(lián)儀1200能量,照2次)


4. 加入25mLBlocking Buffer,以約70rpm在脫色搖床上封閉30min


5. 將SA-HRP以1:30000-50000稀釋于12mL Blocking Buffer,脫色搖床70rpm作用20min

(洗膜過(guò)程全部在脫色搖床上進(jìn)行, 約100-140prm)


6. Buffer II  25ml,  5min

7. wash buffer 25ml  15min

8. Buffer III  25ml  5min×2次

9. 0.1%SDS in 2×SSC, 5min×2次

10. 0.1%SDS in 1×SSC, 10min×2次

11. 0.1%SDS in 0.5×SSC, 5min×2次

12. 將膜于濾紙稍適吸干,加入到以1:20稀釋的發(fā)光反應(yīng)液(寧波奧唯),作用1-5 min,將尼龍膜封于保鮮膜中(避免褶皺和氣泡的產(chǎn)生),暗室曝光1-5min,檢測(cè)信號(hào)。

 


錨點(diǎn)

注意事項(xiàng)


使用此protocol效果圖


 


圖1. 用10ng/ml的mLT-?刺激MEF細(xì)胞,分別刺激0、15、30、60、120min,檢測(cè)NF-?B的量。(p:probe only. 只加入標(biāo)記探針未加入核蛋白抽提物)

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